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撥開云霧見月明——英捷iBright FL1500 Western熒光成像分析儀技術(shù)特點(diǎn)解析-3
Western成像的iBright FL1500 Universal Mode方案
Western Blot實(shí)驗(yàn)流程中,SDS-PAGE凝膠和免染膠、凝膠與Blot、ECL Blot與熒光Blot之間檢測成像原理和方法不盡相同。
凝膠無論用麗春紅S、考馬斯亮藍(lán)染色,通常要用紫外-白光轉(zhuǎn)換屏(疊放于紫外透射臺(tái)上組合使用,將紫外線轉(zhuǎn)換為白光)或LED白光板(自帶電源接口,發(fā)光效率高、照明均勻,對(duì)低豐度條帶分辨靈敏度高),白光從凝膠底部透射進(jìn)行成像。凝膠覆蓋區(qū)透射白光會(huì)因凝膠和樣品吸收和散射作用,亮度減弱。但在凝膠覆蓋區(qū)外,白光直射進(jìn)入成像單元。若曝光時(shí)間較長,極易因CCD像元電子阱容量飽和而發(fā)生光電子外溢、污染圖像成像區(qū),使圖像失去定量分析價(jià)值。不僅透射光如此,采用反射白光檢測應(yīng)用中,若樣品反射白光過強(qiáng),同樣會(huì)出現(xiàn)圖像局部過度曝光現(xiàn)象。為此,iBright FL1500預(yù)裝有針對(duì)400-700 nm波長可見光的中性密度濾光片(Neutral density filter, ND filter),以降低LED反射光強(qiáng)度,避免反射光成像過曝風(fēng)險(xiǎn)。
蛋白印跡ECL檢測須排除一切外來光源干擾。這使得蛋白凝膠、蛋白Blot成像的操作互不兼容,無法同時(shí)進(jìn)行。因此,以印跡微弱光信號(hào)檢測為首務(wù)的Western成像系統(tǒng),白光屏或白光板均非必備附件。可喜的是,iBright FL1500的標(biāo)配附件含有LED白光板!
除去亮考、銀染這類非特異性染色法,用SYPRO Ruby蛋白凝膠染色劑、No-Stain免染蛋白熒光標(biāo)記試劑處理凝膠的成像分析,也是樣品總蛋白定量的常用手段。
SYPRO Ruby熒光成像,既可用伯樂ChemiDoc MP、ChemiScope 6200這類標(biāo)配302nm紫外透射光源的Western 成像儀進(jìn)行,也可以依托iBright FL1500、iBright CL750和iBright CL1500(包括iBright CL1000)配備的488nm LED透射光源完成。為防止白光干擾熒光信號(hào)采集,凝膠樣品的熒光檢測和凝膠透射、反射白光分析也不可同時(shí)實(shí)施。
正是Western Blot實(shí)驗(yàn)流程中凝膠和印跡樣品,透射與反射光運(yùn)用、熒光與發(fā)光等不同檢測方法之間的相互沖突,催生了多功能智能化Western成像系統(tǒng)。
1、iBright FL1000代表的Western多模式成像解決方案
iBright FL1000是invitrogen iBright FL1500的上一代產(chǎn)品,2017年上市。
為解決Western Blot多步驟、多種標(biāo)記成像需求,iBright FL1000系統(tǒng)開發(fā)了4種成像模式。
表1. iBright FL1000系統(tǒng)四種成像模式
成像模式 | 適用的樣品類型 |
核酸凝膠模式 (Nucleic acid gels) | 對(duì)熒光染料標(biāo)記的核酸(DNA、RNA)凝膠的成像模式,適用于: Ethidium Bromide, SYBR Safe, SYBR Green、SYBR Gold熒光染料 |
蛋白質(zhì)凝膠模式 (Protein gels) | 用于染色或熒光標(biāo)記的蛋白質(zhì)凝膠檢測,包括: Colorimetric staining of gels (e.g., 考馬斯染色和銀染的蛋白質(zhì)凝膠) membranes (e.g., Ponceau S, Pierce Reversible Protein Stain); fluorescence staining of gels (e.g., 免染熒光標(biāo)記和SYPRO標(biāo)記蛋白凝膠) |
蛋白印跡發(fā)光模式 (Chemi Blots) | 用于蛋白印跡化學(xué)發(fā)光信號(hào)的檢測,適用于: Chemiluminescence with HRP and AP substrates (e.g., SuperSignal and Invitrogen Western Breeze substrates) |
蛋白印跡熒光模式 (Fluorescent blots) | Fluorescence with visible and near-infrared (near-IR) fluorophores (e.g., Alexa Fluor and Alexa Fluor Plus dyes and DyLight dyes) |
新手上機(jī),只需根據(jù)測試樣品選擇一種成像模式,并確定白光板的取舍、完成樣品的擺放,余下的操作,從照明的開啟,激發(fā)和檢測濾光片的配置實(shí)用、樣品的自動(dòng)聚焦、曝光時(shí)間的掌控,全部由系統(tǒng)智能管理。
如選擇[Fluorescent blot]進(jìn)行單色或多色熒光成像,只需幾步簡單操作:
1)點(diǎn)擊染料通道dye channel鍵,調(diào)出可選染料列表;
表2 iBright FL1000系統(tǒng)熒光檢測通道
?Excitation Filter / Emission Filter | List of compatible Alexa Fluor Plus dyes |
EX1 455–485nm / EM1 510–555nm | Alexa Fluor Plus 488 |
EX2 515–545nm / EM2 565–615nm | Alexa Fluor Plus 555 |
EX3 610–635nm / EM3 675–720nm | Alexa Fluor Plus 647 |
EX4 655–680nm / EM4 725–750nm | Alexa Fluor Plus 680 |
EX5 745–765nm / EM5 810–850nm | Alexa Fluor Plus 800 |
2)從列表中選擇二抗的標(biāo)記染料對(duì)應(yīng)的檢測通道(EX3和EX4為二選一);
3)為染料選一種色彩(系統(tǒng)將把不同染料標(biāo)記的條帶以偽彩色效果顯示和區(qū)分)、設(shè)定曝光時(shí)間;
4)確認(rèn)完成一個(gè)熒光檢測通道的成像條件設(shè)置;
5)重復(fù)上述4步操作,直至完成其余熒光通道的設(shè)置;
6)點(diǎn)擊[Capture]啟動(dòng)圖像的采集協(xié)議。
討論iBright FL1000系統(tǒng)的[Fluorescent blot]成像模式,是因?yàn)檫@個(gè)模塊具有其它三種應(yīng)用模式所不具備的一個(gè)圖像處理功能——多通道圖像疊加功能。
在熒光Blot成像模式下,系統(tǒng)首先通過不同顏色檢測通道分別采集相應(yīng)波長熒光的圖像,所有圖像采集完成后,以2UP(Universal Mode Preview, UP)圖像預(yù)覽界面顯示全部圖像:預(yù)覽區(qū)上部顯示所有檢測通道獲取的黑白圖像,預(yù)覽區(qū)下部是將同一塊Blot上在不同熒光通道獨(dú)立采集、分別添加了選定的偽彩色后的由多個(gè)通道圖像疊加產(chǎn)生的渲染圖,便于研究者直觀檢視、對(duì)比各靶蛋白條帶的信號(hào)。
熒光Blot模式下多通道圖像疊加功能,在ECL印跡檢測中不適用。但Western實(shí)驗(yàn)結(jié)果發(fā)表、匯報(bào)時(shí),提供Marker、TPN方法驗(yàn)證的圖片證據(jù),無疑使數(shù)據(jù)和分析結(jié)果更詳實(shí)可信。譬如,將蛋白分子Marker序列圖像、ECL檢測法或多色熒光標(biāo)記檢測的靶蛋白條帶圖像和(或)連同熒光方法總蛋白檢測圖像合并疊加到同一張圖片上。因此,iBright FL1000雖滿足了Western Blot實(shí)驗(yàn)多個(gè)環(huán)節(jié)、多方法成像功能的需求,但無法將同一Blot不同成像模式下獲取的圖像整合,沒有解決蛋白Blot樣品分析過程重要圖像信息的碎片化問題。
因此,iBright FL1000成像系統(tǒng)盡管實(shí)現(xiàn)了多種應(yīng)用模式智能化控制,使用中還依然存在不便。首先,相較于常規(guī)蛋白凝膠染色圖像,大量發(fā)表的蛋白Blot圖像中,只見靶蛋白條帶缺少分子量Marker序列條帶驗(yàn)證信息。其次,部分實(shí)驗(yàn)人員反映,采集的蛋白Blot圖像中,分子量Marker條帶與靶蛋白顏色深淺相反、不一致。這些Western成像和分析中的經(jīng)典煩惱,隨著iBright FL1500系統(tǒng)Universal Mode的應(yīng)用而得到了完美解決。
2、Universal Mode的Western成像解決方案
iBright FL1500的Universal Mode(通用模式),官方定義為:
Custom Mode to image samples containing one or more signal types, such as chemiluminescence, fluorescence, colorimetric stains, and/or visible images; image display is similar to fluorescent blot mode and allows one to assign false color to any sample.
就是說,這種自定義成像模式,能對(duì)包含有一種或多種信號(hào)類型(化學(xué)、熒光和/或可見光)的同一個(gè)樣品別按設(shè)定的成像模式、光學(xué)通道和工作先后順序完成多中模式圖像的采集,并自動(dòng)將這些各自獨(dú)立的圖像疊加成一張圖,再加上漂亮的偽彩色渲染后呈現(xiàn)。而所有原始圖像和疊加圖像均可保存和輸出。
通用成像模式適用于iBright FL1500與iBright CL1500,但iBright CL750除外。
討論iBright FL1500通用成像模式前,首先明確2個(gè)基本概念。
第一,無論蛋白凝膠考染、蛋白Blot麗春紅S染色,CCD曝光所采集的光學(xué)信號(hào)均非樣品本身發(fā)射,是入射白光接觸樣品時(shí)被吸收、散射或反射后的結(jié)果。從條帶區(qū)始發(fā)進(jìn)入CCD的信號(hào)要弱于從條帶毗鄰區(qū)背景始發(fā)的信號(hào),使CCD輸出的是黑帶白底圖像。而蛋白凝膠或印跡,無論ECL或熒光標(biāo)記、檢測光源是透射抑或反射,CCD成像信號(hào)都源于樣品自身發(fā)射,樣品豐度越高,發(fā)光基團(tuán)量子效率越高,則CCD輸出的亮帶暗底圖像上條帶越發(fā)明亮。
第二,Western成像系統(tǒng)采集的圖像,與經(jīng)實(shí)驗(yàn)人員處理后用于發(fā)文匯報(bào)所用圖像,本質(zhì)等效而條帶-背景黑白對(duì)比呈現(xiàn)效果相反(具體原因,參考《光密度值和灰度值如何在Western Blot條帶定量和凝膠圖像分析中應(yīng)用? 》)。不管marker、總蛋白、靶蛋白和管家蛋白條帶的成像機(jī)制如何,習(xí)慣上最終都要人為地“歸一化”轉(zhuǎn)為黑條帶白背景的發(fā)表圖片效果。
iBright FL1500通用成像模式將熒光、發(fā)光、反射/透射白光這些互不兼容的檢測程序融為一體,達(dá)到井水不犯河水般和諧,靠的是對(duì)應(yīng)用的時(shí)序管理。本質(zhì)是讓實(shí)驗(yàn)人員綜合權(quán)衡靶蛋白檢測方法、分子量Marker類型和條帶信號(hào)強(qiáng)度歸一化方法后,依托系統(tǒng)個(gè)智能化檢測通道成像控制功能,把對(duì)系統(tǒng)資源利用存在沖突的成像任務(wù)按信號(hào)檢測的緊迫程度進(jìn)行排隊(duì)后,由成像系統(tǒng)動(dòng)執(zhí)行實(shí)驗(yàn)協(xié)議。通用成像模式DIY編程模塊,實(shí)現(xiàn)了蛋白Blot成像過程一鍵完成。
我們以Western實(shí)驗(yàn)檢測AKT信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路中磷酸化p-AKT水平檢測為例,了解一下通用成像模式的操作流程。實(shí)驗(yàn)中以IGF-1誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞的AKT磷酸化,采用化學(xué)發(fā)光檢測 (SuperSignal West Femto)。No-Stain 蛋白標(biāo)記試劑標(biāo)記所有條帶總蛋白(用于執(zhí)行TPN處理)。分子量Marker用的是iBright prestained marker (化學(xué)發(fā)光檢測)。完成二抗孵育后在iBright FL1500上采用通用成像模式檢測。
檢測協(xié)議的主要設(shè)定步驟包括:
① 選通用成像模式
② 選Chemi blots通道下SuperSignal West Femto底物(化學(xué)發(fā)光法完成(AKT、marker檢測)
③ 選擇TPN No-Stain通道下的No-Stain Labeled Membrane應(yīng)用(熒光通道完成總蛋白檢測)
④ 確定點(diǎn)擊圖像捕獲按鈕
在通用成像模式下,系統(tǒng)將按設(shè)定的順序分階段完成所有檢測通道的圖像采集。
在2UP圖像預(yù)覽界面,系統(tǒng)將不同檢測通道下獲取的帶marker的AKT化學(xué)發(fā)光原圖、總蛋白熒光原和兩個(gè)檢測通道圖像疊加后的圖像分別顯示。
3、小結(jié)
通常,在核酸、蛋白凝膠圖像中,分子量Marker序列條帶是座上客(占據(jù)左側(cè)第一泳道位置),用于指示目標(biāo)條帶的分子量范圍。Western Blot實(shí)驗(yàn)按理也應(yīng)遵守同樣的報(bào)告規(guī)則,但實(shí)際執(zhí)行情況并非如此,主要是兩方面的原因造成的。
商品化的蛋白分子Marker,無論是用戶自染型、出廠預(yù)染型、Stain-free免染型、熒光標(biāo)記型,還是化學(xué)發(fā)光標(biāo)記型,marker都具有清晰的條帶外形、適宜的條帶亮度和穩(wěn)定的批次重復(fù)性。即便Marker與條帶都用ECL發(fā)光標(biāo)記、在同一Blot上同步添加底物和上機(jī)檢測,目標(biāo)蛋白條帶,特別是低表達(dá)靶蛋白,也難以企及marker捷足先登的優(yōu)秀表現(xiàn)。當(dāng)Marker和高表達(dá)蛋白條帶信號(hào)進(jìn)入系統(tǒng)的線性檢測范圍,甚至要過曝超出系統(tǒng)線性范圍極限了,都不見弱信號(hào)條帶現(xiàn)身。因此,實(shí)驗(yàn)中常進(jìn)行裁膜,將靶蛋白泳道與marker條帶分開,單獨(dú)孵育和上機(jī)檢測。不同Blot膜條轉(zhuǎn)移效率存在誤差、上樣時(shí)擺放位置和對(duì)齊角度的偏差、系統(tǒng)自動(dòng)曝光控制下曝光時(shí)間的差異等,使同一Blot實(shí)驗(yàn)生成最終報(bào)告圖片,不是一張完整的mini膜,而是若干獨(dú)立小裁條的拼圖,蛋白條帶信號(hào)強(qiáng)弱、條帶位置和形狀及圖像背景表現(xiàn)各異。而常規(guī)成像控制軟件的圖片合并功能模塊又難以有效適應(yīng)蛋白Blot圖像整合的要求。這就造成了Western 蛋白印跡報(bào)告圖中的種種“合理”現(xiàn)狀。
Invitrogen為iBright成像分析儀開發(fā)的Universal Mode通用成像控制模式,通過軟件對(duì)不同檢測光學(xué)通道成像的時(shí)序管理、成像區(qū)域的設(shè)置,可對(duì)同一個(gè)轉(zhuǎn)印膜進(jìn)行多輪次、多方法、多目標(biāo)和多圖片采集(可以分批次上樣和成像),并能對(duì)控制協(xié)議下全部Western Blot實(shí)驗(yàn)要素的圖像提供整合、疊加顯示功能,為研究人員帶來美輪美奐、絢麗多彩的WB夢幻之圖。
通用成像控制模式實(shí)現(xiàn)對(duì)蛋白印跡各要素、熒光、發(fā)光、可見光成像等多種檢測方法在同一塊Blot上的全覆蓋、大融合,又具有各獨(dú)立成像控制模式的圖像分析功能。Universal Mode只適用于iBright FL1500、iBright CL1500兩個(gè)型號(hào)。
參考文獻(xiàn):
[1]iBright CL1500 Imaging System and the iBright FL1500 Imaging System USER GUIDE Rev B.0
[2]ImageJ User Guide (IJ 1.46r)